Aislamiento y caracterización molecular de cepas de E. coli y Klebsiella spp productoras de betalactamasas de espectro extendido, y de Staphylococcus spp resistentes a meticilina en murciélagos hematófagos y animales de crianza extensiva en la región de Lima

• Autor: Melgarejo Anamaría, Gabriela María
• Formato: tesis de grado
• Fecha de Publicación: 2018
• Institución: Universidad Peruana Cayetano Heredia
• Repositorio: UPCH-Institucional
• Lenguaje: español
• OAI Identifier: oai:repositorio.upch.edu.pe:20.500.12866/3950
• Enlace del recurso: https://hdl.handle.net/20.500.12866/3950
• Nivel de acceso: acceso embargado
• Materia: Farmacorresistencia Bacteriana; Resistencia betalactámica; Staphylococcus aureus Resistente a Meticilina; Farmacorresistencia Microbiana; Quirópteros; https://purl.org/pe-repo/ocde/ford#4.03.01

La resistencia bacteriana es un fenómeno biológico natural donde el uso del antibiótico obliga al microorganismo a adaptarse al fármaco por presión selectiva o morir, de allí que el uso indiscriminado de antibióticos con fines profilácticos o como tratamiento conlleva a posibles riesgos de proliferación de cepas resistentes a otros animales, tanto domésticos como de fauna silvestre. El presente estudio tuvo como objetivo el aislamiento de cepas de Escherichia coli y Klebsiella pneumonae productoras de betalactamasas de espectro extendido (BLEE) y de Staphylococcus aureus resistentes a meticilina (MRSA) en murciélagos hematófagos y animales domésticos de crianza extensiva en cinco provincias de la región de Lima. Se tomaron muestras fecales y nasales a 218 murciélagos hematófagos (Desmodus rotundus) y a 134 animales de crianza (Bovino, caprinos y porcinos). Las cuales fueron cultivadas directamente en dos agares cromogénicos: Hicrome® ESBL agar base, obteniéndose crecimiento bacteriano en (130/352) ejemplares de ganado y murciélagos: y (9/352) en Hicrome® MeReSa agar base para ambas especies estudiadas. La identificación de los aislados se hizo mediante la técnica de Maldi Tof (desorción/ionización mediante láser asistida por matriz), donde se tipificó al 87.7% (114/130) como E. coli, 3% (4/130) como Klebsiela pneumoniae y ninguna (0/9) como Staphylococcus spp. Posteriormente, la producción de betalactamasas de espectro extendido se confirmó por la prueba de sinergia del doble disco, donde el 5.5% de las muestras de murciélagos y el 79% de ganado fueron E. coli y K. Pneumoniae productoras de BLEE. Por último, se identificaron los genes de resistencia β-lactámicos (bla), por medio del análisis molecular PCR multiplex, expresándose así los genes bla CTX-M-gr1, blaCTX-M-gr9, blaOXA-like y blaTEM para ambos especies.