Establecimiento y propagación in vitro de Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza (Cactaceae) a partir del tejido areolar
Descripción del Articulo
Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza es un cactus perteneciente a la familia Cactaceae, endémica de Tacna y Moquegua. Considerado como planta de uso medicinal y alimenticio para los pobladores del lugar, se encuentra actualmente en peligro de extinción. Dicha investigación se...
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| Formato: | tesis de grado |
| Fecha de Publicación: | 2019 |
| Institución: | Universidad Nacional Del Altiplano |
| Repositorio: | UNAP-Institucional |
| Lenguaje: | español |
| OAI Identifier: | oai:https://repositorio.unap.edu.pe:20.500.14082/11555 |
| Enlace del recurso: | http://repositorio.unap.edu.pe/handle/20.500.14082/11555 |
| Nivel de acceso: | acceso abierto |
| Materia: | Ciencias Biomédicas Biotecnología Vegetal |
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Establecimiento y propagación in vitro de Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza (Cactaceae) a partir del tejido areolar Huanca Percca, Maritza Ciencias Biomédicas Biotecnología Vegetal |
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Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza es un cactus perteneciente a la familia Cactaceae, endémica de Tacna y Moquegua. Considerado como planta de uso medicinal y alimenticio para los pobladores del lugar, se encuentra actualmente en peligro de extinción. Dicha investigación se llevó a cabo en el Laboratorio de Cultivo in vitro de Tejidos Vegetales de la Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad Nacional del Altiplano-Puno, por un periodo de 17 meses. Se plantearon los siguientes objetivos, a) Evaluar la respuesta morfológica de las plántulas de Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza (Cactaceae) inducido al medio Murashige y Skoog, b) Propagar in vitro tejidos morfológicamente viables de Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza (Cactaceae) a concentraciones combinadas de ANA: 0.0 mg/L, 0.5 mg/L, 1.0 mg/L y BAP: 1.0 mg/L, 2.0 mg/L, 3.0 mg/L. La metodología consistió en dos etapas, la primera fue la elección de Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza como especie a trabajar, luego se recolectó las semillas y se provocó la germinación en placa Petri utilizando como sustrato el algodón humedecido con agua destilada, después de 20 días de germinación fueron cultivadas en medio basal de Murashige y Skoog. Para la etapa de multiplicación, primero se realizó la inducción de callo que se cultivó en medio Murashige y Skoog suplementado a concentraciones combinadas de ANA (Ácido naftalenacético) y BAP (Bencilaminopurina), para la formación de brotes se cultivó en medio Murashige y Skoog adicionado con ácido giberélico (2, 4 y 6 mg/L). Los resultados se sometieron a la prueba no paramétrica de Kruskal Wallis (p˂0.05). Se determinó que el medio Murashige y Skoog adicionado con 2 mg/L de BAP + 1 mg/L de ANA y con 1 mg/L de BAP + 1 mg/L de ANA fueron mejores para la inducción del callo. El mejor tratamiento para la proliferación de brotes fue 2 mg/L de ácido giberélico (7.67 brotes por callo), mientras que en 4 mg/L de ácido giberélico se produjo el mejor desarrollo, pero fue menor respecto al número de brotes por callo (3.33 brotes por callo). En conclusión, fue posible llevar a cabo la propagación in vitro de Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza lo que puede ser una herramienta importante para su conservación. |
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Se plantearon los siguientes objetivos, a) Evaluar la respuesta morfológica de las plántulas de Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza (Cactaceae) inducido al medio Murashige y Skoog, b) Propagar in vitro tejidos morfológicamente viables de Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza (Cactaceae) a concentraciones combinadas de ANA: 0.0 mg/L, 0.5 mg/L, 1.0 mg/L y BAP: 1.0 mg/L, 2.0 mg/L, 3.0 mg/L. La metodología consistió en dos etapas, la primera fue la elección de Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza como especie a trabajar, luego se recolectó las semillas y se provocó la germinación en placa Petri utilizando como sustrato el algodón humedecido con agua destilada, después de 20 días de germinación fueron cultivadas en medio basal de Murashige y Skoog. Para la etapa de multiplicación, primero se realizó la inducción de callo que se cultivó en medio Murashige y Skoog suplementado a concentraciones combinadas de ANA (Ácido naftalenacético) y BAP (Bencilaminopurina), para la formación de brotes se cultivó en medio Murashige y Skoog adicionado con ácido giberélico (2, 4 y 6 mg/L). Los resultados se sometieron a la prueba no paramétrica de Kruskal Wallis (p˂0.05). Se determinó que el medio Murashige y Skoog adicionado con 2 mg/L de BAP + 1 mg/L de ANA y con 1 mg/L de BAP + 1 mg/L de ANA fueron mejores para la inducción del callo. El mejor tratamiento para la proliferación de brotes fue 2 mg/L de ácido giberélico (7.67 brotes por callo), mientras que en 4 mg/L de ácido giberélico se produjo el mejor desarrollo, pero fue menor respecto al número de brotes por callo (3.33 brotes por callo). En conclusión, fue posible llevar a cabo la propagación in vitro de Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza lo que puede ser una herramienta importante para su conservación.Tesisapplication/pdfspaUniversidad Nacional del Altiplano. Repositorio Institucional - UNAPinfo:eu-repo/semantics/openAccesshttps://creativecommons.org/licenses/by/4.0/deed.esUniversidad Nacional del AltiplanoRepositorio Institucional - UNAPreponame:UNAP-Institucionalinstname:Universidad Nacional Del Altiplanoinstacron:UNAPCiencias BiomédicasBiotecnología VegetalEstablecimiento y propagación in vitro de Neowerdermannia chilensis subsp. peruviana (Ritter) Ostolaza (Cactaceae) a partir del tejido areolarinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesisSUNEDULicenciada en BiologíaBiologíaUniversidad Nacional del Altiplano. 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